Curso en Técnicas de Biología Molecular y PCR en el Diagnóstico Clínico

Detalles

Este programa avanzado sobre Técnicas de Biología Molecular y PCR en el Diagnóstico Clínico ofrece una formación técnica de élite diseñada para facultativos y técnicos de laboratorio que buscan dominar las herramientas más precisas de la medicina moderna. El curso profundiza en la ingeniería genética aplicada, desde la extracción automatizada de ácidos nucleicos hasta la interpretación de datos complejos en secuenciación masiva (NGS), proporcionando las competencias necesarias para implementar protocolos de PCR en tiempo real (qPCR) y digital, fundamentado en los estándares internacionales de bioseguridad y calidad analítica.

A lo largo de sus 10 módulos exhaustivos, se aborda con rigor el diagnóstico molecular de enfermedades infecciosas, oncología de precisión y genética clínica. Se presta especial atención a las variantes de la PCR, la detección de cargas virales y la clasificación de variantes genéticas según la normativa ACMG, capacitando al profesional para liderar laboratorios de diagnóstico molecular. El dominio de las técnicas de hibridación (FISH) y los paneles sindrómicos asegura una respuesta diagnóstica rápida y eficaz, esencial para la gestión de patologías críticas y la medicina personalizada.

Orientado a la práctica clínica de alta resolución, este curso integra la bioinformática diagnóstica con la ética genómica. Al finalizar, el profesional estará capacitado para validar métodos moleculares, gestionar hallazgos incidentales en exomas y aplicar la biopsia líquida en el seguimiento oncológico. Esta formación consolida la biología molecular como el pilar fundamental del laboratorio clínico contemporáneo, asegurando una atención al paciente basada en la exactitud molecular, la trazabilidad metrológica y el compromiso con la innovación tecnológica en salud pública.

Evaluación

El sistema de evaluación de nuestros cursos online se basa en la realización de exámenes tipo test, siguiendo el formato habitual de los cursos baremables para oposiciones y concursos de méritos.

Al finalizar cada módulo o bloque de contenido, el alumnado deberá completar un cuestionario tipo test, diseñado para comprobar la correcta asimilación de los conocimientos adquiridos durante el curso.

Para superar la formación, será necesario alcanzar el porcentaje mínimo de respuestas correctas establecido en cada prueba. El sistema permite realizar varios intentos, facilitando el aprendizaje progresivo y la mejora de resultados.

Los exámenes tipo test están elaborados conforme a criterios formativos y orientados a reforzar los contenidos más relevantes, ayudando además a familiarizarse con el formato habitual de evaluación en oposiciones.

Una vez superado el curso, se expedirá el correspondiente certificado acreditativo, válido como mérito en oposiciones, bolsas de empleo y concursos-oposición dentro de la Administración Pública, conforme a la normativa vigente.

Metodología

Nuestros cursos se imparten en modalidad 100% online, diseñados para facilitar una formación flexible, accesible y compatible con la preparación de oposiciones y la mejora del baremo de méritos.

La metodología está orientada a un aprendizaje práctico, actualizado y enfocado a la realidad de la Administración Pública, permitiendo al alumnado adquirir competencias aplicables en su ámbito profesional. Todos los contenidos están estructurados de forma clara y progresiva, facilitando el estudio autónomo y eficaz.

A través de nuestra plataforma de teleformación, el alumnado tendrá acceso a materiales didácticos completos, recursos descargables, contenidos actualizados y actividades prácticas, adaptadas a los requisitos habituales de los cursos baremables para oposiciones.

El sistema de aprendizaje está diseñado para que el estudiante avance a su propio ritmo, con acceso disponible las 24 horas. Además, contará con soporte tutorial, garantizando la resolución de dudas durante todo el proceso formativo.

Esta metodología permite obtener una formación de calidad, válida para sumar puntos en oposiciones, bolsas de empleo y concursos de méritos en la Administración Pública.

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Temario

Bioquímica del ADN y ARN
1. Composición nucleotídica: bases nitrogenadas, pentosas y grupos fosfato
2. Estructura de doble hélice y enlaces de hidrógeno (A-T, G-C)
3. Topología del ADN: superenrollamiento, histonas y organización cromatínica
4. Tipos de ARN: mensajero, transferente, ribosómico y ARN de interferencia
Flujo de la información genética (Dogma Central)
1. Replicación del ADN: enzimas clave (helicasas, primasas y polimerasas)
2. Transcripción: síntesis de ARN y procesamiento de intrones/exones
3. Traducción: código genético y síntesis de proteínas en el ribosoma
4. Mecanismos de regulación epigenética: metilación y acetilación
Mutaciones y variabilidad genética
1. Polimorfismos de nucleótido único (SNP) y su relevancia clínica
2. Mutaciones puntuales, inserciones, deleciones y variaciones en el número de copias (CNV)
3. Mecanismos de reparación del ADN y patologías asociadas al fallo
4. Impacto de las mutaciones en la expresión fenotípica y enfermedades raras

Técnicas de lisis celular y desproteinización
1. Métodos físicos: molienda, sonicación y ciclos de congelación-descongelación
2. Métodos químicos: uso de detergentes (SDS) y sales caotrópicas
3. Digestión enzimática mediante Proteinasa K para eliminación de proteínas
4. Control de la degradación: uso de inhibidores de nucleasas (ARNasas)
Protocolos de purificación y aislamiento
1. Extracción líquido-líquido: método de fenol-cloroformo
2. Purificación en columna de sílice por adsorción selectiva
3. Aislamiento mediante esferas magnéticas (Magnetic Beads)
4. Precipitación con etanol/isopropanol y lavado de la fracción final
Cuantificación y control de calidad post-extracción
1. Espectrofotometría (A260/A280): evaluación de pureza y concentración
2. Fluorometría (Qubit): cuantificación específica de ADN de doble cadena
3. Electroforesis en gel para evaluar la integridad y fragmentación
4. Automatización en la extracción: sistemas de alto rendimiento para diagnóstico

Cinética y componentes de la PCR
1. Diseño de cebadores (Primers): temperatura de fusión (Tm) y especificidad
2. ADN Polimerasas termoestables: Taq Polimerasa y enzimas de alta fidelidad
3. Papel de los dNTPs, el tampón de reacción y el cloruro de magnesio ($MgCl_2$)
4. El termociclador: rampas de temperatura y precisión térmica
Ciclos de amplificación térmica
1. Desnaturalización inicial: rotura de puentes de hidrógeno a $95^\circ C$
2. Hibridación (Annealing): unión de cebadores a la secuencia diana
3. Extensión (Elongación): síntesis de la cadena complementaria a $72^\circ C$
4. Cálculo del rendimiento teórico: crecimiento exponencial $2^n$
Prevención de la contaminación en el laboratorio
1. Diseño del laboratorio: flujo unidireccional y separación de áreas (Pre/Post-PCR)
2. Uso de cabinas de flujo laminar y radiación UV para descontaminación
3. Sistemas dUTP/UNG para la eliminación de ácidos nucleicos remanentes
4. Controles positivos, negativos y controles internos de extracción

RT-PCR (Transcripción Inversa)
1. Uso de la Transcriptasa Inversa para la síntesis de ADNc
2. Cebadores específicos vs cebadores oligo(dT) y random primers
3. Aplicación en el diagnóstico de virus ARN (VIH, SARS-CoV-2)
4. Análisis de la expresión génica y cuantificación de ARN mensajero
Multiplex PCR y Nested PCR
1. Detección simultánea de múltiples patógenos en una sola reacción
2. Optimización de cebadores para evitar interferencias y dímeros
3. PCR anidada: aumento de la sensibilidad y especificidad diagnóstica
4. Aplicaciones en paneles sindrómicos (respiratorios, digestivos)
PCR Digital (dPCR y ddPCR)
1. Partición de la muestra en miles de gotas de aceite (nanolitros)
2. Cuantificación absoluta sin necesidad de curvas de calibrado
3. Detección de alelos minoritarios y variantes raras en biopsia líquida
4. Aplicación en el seguimiento de la carga viral mínima residual

Sistemas de detección por fluorescencia
1. Agentes intercalantes (SYBR Green): ventajas y falta de especificidad
2. Sondas de hibridación (TaqMan): especificidad basada en la transferencia FRET
3. Sondas Molecular Beacons y Scorpions: mecanismos de acción
4. Elección del fluoróforo: canales de lectura y multiplexado
Análisis de datos y curvas de amplificación
1. Definición de Línea Base (Baseline) y Umbral de detección (Threshold)
2. El valor Ct (Cycle Threshold): relación inversa con la carga inicial
3. Eficiencia de la PCR: cálculo a partir de la pendiente de la curva
4. Análisis de las curvas de disociación (Melting Curves) para SYBR Green
Cuantificación absoluta y relativa
1. Uso de curvas estándar con concentraciones conocidas de ADN
2. Método comparativo $\Delta\Delta Ct$ para estudios de expresión génica
3. Genes de referencia (Housekeeping) para la normalización de datos
4. Interpretación clínica de la carga viral y umbrales terapéuticos

Electroforesis en gel de agarosa y poliacrilamida
1. Migración de ácidos nucleicos según tamaño y carga eléctrica
2. Uso de marcadores de peso molecular y agentes de tinción (Bromuro de etidio, SYBR Safe)
3. Electroforesis capilar: automatización y alta resolución en fragmentos
4. Análisis de RFLP (Polimorfismos de longitud de fragmentos de restricción)
Southern Blot y Northern Blot
1. Transferencia de ADN/ARN a membranas de nitrocelulosa o nylon
2. Hibridación con sondas marcadas (radiactivas o fluorocromos)
3. Detección de reordenamientos génicos y grandes deleciones
4. Evolución hacia técnicas de hibridación in situ (FISH)
Hibridación In Situ Fluorescente (FISH)
1. Detección de anomalías cromosómicas en células en metafase o interfase
2. Uso en oncología para la detección de amplificaciones (HER2, ALK)
3. Microarrays de ADN (Hibridación Genómica Comparada - CGH)
4. Diagnóstico prenatal de aneuploidías y síndromes de microdeleción

Fundamentos de la secuenciación enzimática
1. Uso de dideoxinucleótidos (ddNTPs) como terminadores de cadena
2. Marcaje fluorescente de terminadores (BigDye Terminator)
3. Separación por electroforesis capilar y detección por láser
4. El electroferograma: interpretación de picos y calidad de la secuencia
Aplicaciones clínicas de la secuenciación Sanger
1. Validación de variantes detectadas por otras técnicas moleculares
2. Detección de mutaciones en genes específicos (BRCA1/2, EGFR)
3. Estudios de filiación y medicina forense (STRs)
4. Secuenciación de genes de resistencia en bacterias y virus
Limitaciones y escalabilidad
1. Capacidad de lectura de fragmentos individuales (un solo gen/exón)
2. Baja sensibilidad para la detección de mosaicismos (límite del 15-20%)
3. Coste y tiempo por base secuenciada en proyectos de gran escala
4. Mantenimiento y calibración del secuenciador capilar

Tecnologías de secuenciación masiva en paralelo
1. Preparación de librerías: fragmentación, ligación de adaptadores y enriquecimiento
2. Secuenciación por síntesis (Illumina): clusters y nucleótidos fluorescentes reversiblemente terminados
3. Secuenciación por semiconductores (Ion Torrent): detección de iones hidrógeno
4. Secuenciación de tercera generación: Nanopore y PacBio (lecturas largas)
Paneles de genes, Exoma y Genoma completo
1. Paneles dirigidos para oncología y cardiogenética
2. Secuenciación del Exoma Completo (WES) en el diagnóstico de enfermedades raras
3. Secuenciación del Genoma Completo (WGS): retos y aplicaciones
4. Metagenómica para la identificación de patógenos desconocidos
Bioinformática básica para el diagnóstico
1. Alineamiento de lecturas contra el genoma de referencia
2. Llamada de variantes (Variant Calling) y filtrado de artefactos
3. Anotación biológica y bases de datos de variantes (ClinVar, gnomAD)
4. Criterios de clasificación de variantes según la ACMG

Diagnóstico viral y carga viral
1. Detección cualitativa y cuantitativa de Hepatitis B y C
2. Monitorización del VIH: carga viral y test de resistencias
3. Diagnóstico rápido de infecciones respiratorias virales
4. Papilomavirus Humano (VPH): genotipado y cribado de cáncer de cérvix
Diagnóstico bacteriano y resistencias
1. Detección molecular de Mycobacterium tuberculosis y resistencia a rifampicina
2. Detección de bacterias multirresistentes (MRSA, carbapenemasas)
3. Diagnóstico de enfermedades de transmisión sexual (Chlamydia, Neisseria)
4. Sepsis: paneles moleculares rápidos a partir de hemocultivo positivo
Point-of-Care Molecular (POCT)
1. Sistemas de PCR rápida "cartridge-based" (GeneXpert, FilmArray)
2. Amplificación isotérmica (LAMP) para entornos de bajos recursos
3. Diagnóstico molecular a la cabecera del paciente
4. Impacto en la gestión de brotes y salud pública

Validación y Verificación de métodos moleculares
1. Determinación del Límite de Detección (LoD) y Límite de Cuantificación (LoQ)
2. Estudios de precisión, veracidad y robustez analítica
3. Participación en programas de evaluación externa de la calidad (EEC)
4. Acreditación bajo la norma ISO 15189 específica para biología molecular
Gestión de datos y bioética
1. Protección de datos genómicos y privacidad del paciente
2. Manejo de los hallazgos incidentales en secuenciación genómica
3. Asesoramiento genético: comunicación de resultados y riesgos familiares
4. Implicaciones éticas de la edición génica y el diagnóstico prenatal
Innovación y futuro del diagnóstico molecular
1. Biopsia líquida: ADN circulante (ctDNA) para el seguimiento oncológico
2. Uso de CRISPR-Cas como herramienta de diagnóstico rápido
3. Inteligencia Artificial aplicada a la interpretación de variantes
4. La medicina de precisión: farmacogenómica y terapias personalizadas

Titulación Certificada

Acreditado por la Universidad Tecnológica Atlántico Mediterráneo

La Universidad Tecnológica Atlántico Mediterráneo (UTAMED) es una institución universitaria privada orientada a la innovación educativa y especializada en formación superior online de última generación. Como “La Universidad Online del Siglo XXI”, UTAMED impulsa un modelo académico flexible, digital y conectado con las necesidades reales del mercado laboral, promoviendo la docencia, la investigación aplicada, la formación continua y la transferencia de conocimiento tecnológico.

UTAMED y Universal Formación trabajan de manera conjunta para ampliar y fortalecer la oferta educativa online, poniendo a disposición del alumnado programas formativos de alta calidad académica y con un enfoque competencial y profesionalizador. Esta colaboración representa una oportunidad para los estudiantes que buscan una formación universitaria moderna, accesible y adaptada a los retos del entorno digital global.

Título expedido

Una vez finalice su programa formativo, le será expedido el Diploma acreditativo por la Universidad Tecnológica Atlántico Mediterráneo (UTAMED). A continuación se muestra un modelo orientativo: